濕度固定、空氣成分含百分之五之二氧化碳(5%CO2/95%
Air)培養箱。每兩天替換新鮮10%FBS之DMEM/F12,培養細胞至第九天進行實驗。
二、初級細胞的初代培養(Primarymixglialculture)
以麻醉劑pentobarbital將出生1天之鼠犧牲后,將其大腦
皮質組織置于內含penicillin-streptomycine、fungizone及
HBSS配置成的solutionD中,清除血管與殘馀軟腦膜后以機
械方式絞碎。將腦組織浸泡在細胞培養液及0.25%胰蛋白脢
消化液(Trypsin-EDTA)中,在37℃水浴槽靜置5分鐘待細
胞沉淀,去除上清液,加入含有10%FBS(FetalBovineSerum)
DMEMF-12培養液,離心(2000rpm)10分鐘。去除上清液,
加入新的細胞培養液并以電動吸管(Pipet)反覆吸放數次,
溷合均勻,以紗布過濾不要的組織塊。細胞懸浮液以血球計
數器計算細胞數,再分種于預先舖有poly-L-lysine(0.02g/L)
。
處理過的12孔細胞培養皿內(細胞數約為5×105cells/well)
細胞培養于37℃、濕度固定、空氣成分含百分之五之二氧化
碳(5%CO2/95%Air)培養箱。每兩天更換10%FBS之
DMEM/F12之培養液,培養9-12天取用細胞進行實驗。
貳、細胞免疫染色(Immunocytochemicalstaining)
透過細胞免疫化學染色法分別鑑定培養之神經細胞與溷
合膠質細胞,以glialfibrillaryacidicprotein(GFAP)之抗體
標示星狀膠質細胞,以微小管相關蛋白質-2(microtubule
associatedprotein-2,MAP-2)之抗體標示神經細胞,以OX-42
之抗體標示小神經膠細胞。藥物實驗后,給予4%福馬林固定
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二十分鐘,先將樣本以PBS清洗二次,目的為洗去固定液,
以0.4%TritonX-100與1%BSA溷和溶入PBS製成的Blocking
soluyion處理30分鐘,以PBS清洗后分別加入所需之一級抗
體(primaryantibody),包括
anti-MAP-2,存放于4℃反應24小時后以PBS清洗一次,使
用二級抗體(biotinylated
immunoglobulins)反應2小時以PBS清洗一次,加入ABC
solution反應30分鐘,以PBS清洗一次以DAB加5%H2O2
進行呈色反應,并于顯微鏡下觀察神經細胞的型態。
anti-GFAP、anti-OX-42、
anti-rabbit
and
anti-mouse
參、細胞傷亡測試
一、定性:
(1)藉由顯微鏡觀察細胞型態的變化,了解細胞受損的情
況。
(2)
A.原理:
Trypanblue會直接進入死細胞中而呈色,而活細胞膜完
整且具有選擇性通透性,染料無法滲入而不會呈色,由此
可得知細胞存活率,此法又稱色素排除法。
Trypanblue染色法:
B.步驟:
trypanblue(0.4%)與細胞培養液以1:1比例充分溷合,
1ml/well加入培養皿,靜置30分鐘后以PBS清洗至乾
淨,顯微鏡檢查其染色狀況。
二、定量:
MTTassay:
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A.原理:
藥物處理過的細胞,其存活率(cellviability)可以MTT
還原法評估。健康細胞可產生較多之能量供細胞代謝粒腺
體內的琥珀酸去氫酶(succinatedehydrogenase)能將MTT
3,(4,5-dimethyl-thiazol-2-yl)
bromide)由黃色還原為紫色之formazan結晶顆粒,而還原
力的強弱,即可代表琥珀酸去氫酶之活性,也就是代表代
表細胞之生理狀況以及存活率(Manthorpeetal.,1986)
。
2,5-diphenyl-tetrzolium
B.步驟:
藥物實驗后,將溶入0.1MPBS之MTT(5mg/ml)經
0.22µmfilter過濾,以1:9之比例加入細胞培養液,置
于培養箱中約
Isopropanol1000µl/well并反覆沖洗以便將結晶之MTT
完全溶解,取其溶解后之液體置入分光光度計中
(SHIMADZU,UV-1601,Japan)以波長570nm測定
,
MTT反應的量。
另將培養皿置于倒立顯微鏡下觀察型態,藉由觀察細胞
型態的變化,瞭解細胞受損的情形。正常健康的神經元細
胞會呈現平滑之橢圓或圓的外型及直徑一致,外型平滑的
軸突。死亡的細胞外觀呈現細胞膜不完整,細胞萎縮、破
裂以及軸突斷裂的現象。
1小時后,將上層液體吸除,加入
第三節、資料之統計與分析
將實際測得之數值平均后,以平均值加減標準誤(Mean
±SE)為製作圖表之依據。并使用SigmaPlot套裝軟體,進行
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重複變數單因子變異數分析(One-wayANOVA)來分析各組